English

Orden de extracción y aditivos de tubos

El examen casi nunca te da el color del tubo. Te da la prueba —PT/INR, CBC, panel metabólico básico— y espera que tú la conviertas en tubo y luego en su lugar dentro de la secuencia de CLSI. Un mnemónico de colores solo no aguanta eso.

1. HemocultivosBotella o tubo amarillo con SPS, 8–10 inversiones. Siempre primero, antes de que cualquier aditivo llegue a la botella (CLSI PRE02, antes GP41).
2. Celeste (light blue)Citrato de sodio — PT/INR y aPTT. 3–4 inversiones, y tiene que llegar a la línea de llenado: la proporción 9:1 de sangre a citrato es parte de la prueba.
3. Rojo o dorado (SST)Activador de coágulo, más gel en el SST dorado. 5 inversiones en plástico; el rojo de vidrio sin aditivo lleva 0. Deja coagular parado 30 minutos antes de centrifugar y separa el suero de las células dentro de 2 horas (CLSI GP44).
4. VerdeHeparina de litio o de sodio, para química en plasma. 8–10 inversiones.
5. Lavanda o rosadoK2 EDTA — CBC, HbA1c, tipificación y rastreo de anticuerpos. 8–10 inversiones enseguida, o la muestra hace microcoágulos y rechazan el conteo de plaquetas.
6. GrisFluoruro de sodio con oxalato de potasio — glucosa y lactato. 8–10 inversiones. De último, porque el fluoruro y el oxalato interfieren con la mayor cantidad de otras pruebas.
La punción capilar va al revésEl orden dérmico (fingerstick) de CLSI GP42 es gas en sangre, después EDTA, después los demás aditivos y al final suero. Aquí el EDTA va primero —lo contrario de la punción venosa— porque la sangre capilar empieza a coagular apenas toca la piel.
Butterfly con tubo celesteSi el set de alas (butterfly) recoge primero un tubo de coagulación, saca un tubo de descarte antes para llenar el espacio muerto de la manguera, o el tubo de citrato queda corto.
TorniqueteUn minuto máximo antes de entrar a la vena. Más tiempo hemoconcentra la muestra y sube falsamente el potasio, la proteína total y los conteos celulares (CLSI PRE02).

Dónde se pierde el punto: Sacar el lavanda antes del tubo dorado deja que el K2 EDTA se arrastre, y la química regresa con un potasio falsamente alto y un calcio falsamente bajo — parece una emergencia electrolítica de verdad. La otra trampa: el tubo celeste que quedó corto se vuelve a sacar, nunca se completa con otro tubo ni se diluye, porque el exceso de citrato prolonga falsamente el PT/INR.

Orden de extracción y aditivos de tubos

12 preguntas sobre orden de extracción, con explicación y cita del estatuto en cada respuesta.

12 preguntas

Línea de aprobación: 78%, igual que el examen real

Preguntas y respuestas explicadas

Las 12 preguntas de arriba, con la respuesta correcta y por qué lo es. Todo sobre orden de extracción y aditivos de tubos.

  1. ¿Cuál es el tiempo máximo que un torniquete debe permanecer colocado antes de entrar en la vena?

    • A30 segundos
    • B1 minutoCorrecta
    • C2 minutos
    • D3 minutos

    Por qué: CLSI limita la aplicación del torniquete a 1 minuto antes de entrar en la vena, porque una aplicación más prolongada desplaza agua y moléculas pequeñas fuera de los capilares y hemoconcentra la muestra, elevando falsamente el potasio, las proteínas totales y los recuentos celulares. Dos o tres minutos (C, D) rebasan ampliamente el punto donde comienza el error preanalítico.

    Referencia Domain 3E; CLSI venipuncture standard (PRE02, formerly GP41) one-minute tourniquet limit

  2. El asistente médico ha mantenido el torniquete en el brazo del paciente unos 90 segundos mientras busca una vena. ¿Qué debe hacer a continuación?

    • ACompletar la extracción rápidamente y anotar el retraso en la solicitud.
    • BAflojar un poco el torniquete y seguir buscando la vena.
    • CSoltar el torniquete, esperar unos 2 minutos, y luego volver a colocarlo y hacer la extracción.Correcta
    • DMover el torniquete unas 3 pulgadas más arriba en el brazo y continuar.

    Por qué: Una vez superado el límite de 1 minuto de CLSI, la corrección correcta es soltar el torniquete y esperar unos 2 minutos para que la circulación se normalice antes de volver a colocarlo. Solo aflojarlo (B) o reubicarlo (D) no revierte la hemoconcentración que ya se está produciendo, y terminar rápido (A) envía al laboratorio una muestra con potasio y proteínas falsamente elevados.

    Referencia Domain 3E; CLSI venipuncture standard (PRE02, formerly GP41) tourniquet reapplication after 2 minutes

  3. Siguiendo el orden de extracción de CLSI, ¿cuál tubo se recolecta inmediatamente después de los frascos de hemocultivo?

    • ATubo de tapa celeste con citrato de sodioCorrecta
    • BTubo separador de suero de tapa dorada
    • CTubo de tapa lavanda con EDTA
    • DTubo de tapa verde con heparina

    Por qué: La secuencia de CLSI es hemocultivos, citrato de sodio de tapa celeste, suero rojo o dorado, heparina verde, EDTA lavanda y por último fluoruro/oxalato gris. El tubo celeste va segundo para proteger su proporción exacta de 9:1 de sangre a citrato y para que ningún aditivo de otro tubo se arrastre a la muestra de coagulación. El gris siempre va al final porque el fluoruro y el oxalato contaminan la mayor variedad de otras pruebas.

    Referencia Domain 3E; k132 order of draw; CLSI order of draw (PRE02, formerly GP41)

  4. Un proveedor ordena un PT/INR, un hemograma completo (CBC) y un panel metabólico básico (tubo separador de suero de tapa dorada) al mismo paciente. ¿En qué orden se deben extraer los tubos?

    • ASeparador de suero dorado, celeste, lavanda
    • BLavanda, celeste, separador de suero dorado
    • CCeleste, separador de suero dorado, lavandaCorrecta
    • DCeleste, lavanda, separador de suero dorado

    Por qué: El PT/INR se recolecta en el tubo celeste con citrato, el panel metabólico básico en el tubo separador de suero dorado y el CBC en el tubo lavanda con EDTA, por lo que la secuencia de CLSI da celeste, luego dorado y luego lavanda. Extraer el tubo con EDTA antes del tubo de suero (B, D) permite el arrastre de EDTA potásico, lo que eleva falsamente el potasio y disminuye falsamente el calcio en el panel químico.

    Referencia Domain 3E; k132 order of draw; CLSI order of draw (PRE02, formerly GP41); additive carryover

  5. Se acaba de recolectar un tubo separador de suero de tapa dorada para un panel metabólico completo. ¿Cuál es el manejo correcto antes de centrifugar?

    • ACentrifugar de inmediato para que el suero se separe antes de que empiece la coagulación.
    • BInvertir unas 5 veces y dejar que la muestra coagule en posición vertical al menos 30 minutos a temperatura ambiente.Correcta
    • CColocar el tubo en una mezcla de hielo y agua por 15 minutos y luego centrifugar.
    • DAgitar el tubo vigorosamente para activar el activador de coágulo y luego centrifugar.

    Por qué: Los tubos separadores de suero se invierten unas 5 veces para mezclar el activador de coágulo y deben coagular por completo, al menos 30 minutos a temperatura ambiente, antes de centrifugar; de lo contrario, la fibrina latente contamina el suero y obstruye los analizadores. Centrifugar antes de tiempo (A) deja esa fibrina. Agitar vigorosamente (D) hemoliza la muestra, y el suero de química de rutina no se enfría. El suero debe separarse de las células dentro de las 2 horas posteriores a la recolección.

    Referencia Domain 3E; k140 centrifuge and aliquot; CLSI serum processing (clot 30 min, separate from cells within 2 hours); BD Vacutainer SST 5 inversions

  6. Un tubo de tapa celeste con citrato de sodio recolectado para un PT/INR se llenó solo hasta unos dos tercios. ¿Qué debe hacer el asistente médico?

    • AEnviar el tubo; el laboratorio corregirá el resultado según el volumen extraído.
    • BTransferir sangre de un segundo tubo celeste para completar el tubo que quedó incompleto.
    • CAgregar solución salina estéril para llegar a la línea de llenado.
    • DVolver a recolectar la muestra en un tubo celeste completamente lleno.Correcta

    Por qué: El tubo celeste depende de una proporción de 9:1 de sangre a citrato de sodio; un tubo incompleto lleva exceso de anticoagulante y prolonga falsamente el PT/INR y el TTPa, lo que podría llevar a un proveedor a reducir la dosis de anticoagulante con base en un resultado falso. La única corrección aceptable es volver a recolectar en un tubo completamente lleno. Combinar tubos (B) o diluir con solución salina (C) altera aún más la proporción y nunca es aceptable.

    Referencia Domain 3E; k135 fill level/ratios; CLSI 9:1 blood-to-citrate ratio for coagulation testing

  7. ¿Cuál acción preserva mejor la calidad de un tubo de tapa lavanda con EDTA recolectado para un hemograma completo (CBC)?

    • AInvertir el tubo suavemente de 8 a 10 veces inmediatamente después de la recolección.Correcta
    • BAgitar el tubo enérgicamente por 10 segundos para mezclar el aditivo.
    • CDejar el tubo en posición vertical por 30 minutos antes de mezclarlo.
    • DColocar el tubo en el congelador inmediatamente después de la recolección.

    Por qué: Los tubos con EDTA se invierten suavemente de 8 a 10 veces justo después de la recolección para que el anticoagulante se disperse en la muestra; un tubo con EDTA coagulado o con microcoágulos se rechaza para el CBC porque los recuentos de plaquetas y células salen falsamente bajos. Agitar enérgicamente (B) hemoliza la muestra, mezclar tarde (C) permite la formación de microcoágulos, y congelar (D) rompe los glóbulos rojos.

    Referencia Domain 3E; k135 number of tube inversions; BD Vacutainer inversion guidance (EDTA 8-10 inversions)

  8. Un proveedor ordena una glucosa en sangre que se enviará al laboratorio de referencia más tarde ese día. ¿Cuál tubo conserva el valor de glucosa y por qué?

    • ATubo lavanda con EDTA, porque el EDTA fija la glucosa en la muestra.
    • BTubo celeste con citrato, porque el citrato estabiliza la glucosa sérica.
    • CTubo gris con fluoruro de sodio y oxalato de potasio, porque el fluoruro inhibe la glucólisis.Correcta
    • DTubo verde con heparina, porque la heparina detiene el metabolismo de los glóbulos rojos.

    Por qué: El fluoruro de sodio es un agente antiglucolítico que frena el consumo de glucosa por los glóbulos rojos, y el oxalato de potasio es el anticoagulante; sin ellos, la glucosa disminuye de forma medible cada hora que la muestra permanece en reposo. Por eso el tubo gris también se extrae al final en el orden de CLSI, ya que el arrastre de fluoruro y oxalato interfiere con los electrolitos y las enzimas. La heparina (D) evita la coagulación pero no detiene la glucólisis.

    Referencia Domain 3E; k136 additives and preservatives; CLSI order of draw (gray fluoride/oxalate last)

  9. Una muestra de suero llega al laboratorio con un tinte rosa-rojizo y se rechaza por hemólisis. Todas las siguientes prácticas contribuyen a la hemólisis, EXCEPTO:

    • AAgitar los tubos vigorosamente para mezclar el aditivo
    • BPuncionar el sitio antes de que se seque el alcohol
    • CExtraer la muestra a través de una aguja de calibre 25
    • DDejar que cada tubo al vacío se llene con su propio vacíoCorrecta

    Por qué: La hemólisis libera el contenido intracelular y eleva falsamente el potasio, la LDH y la AST, por lo que una muestra hemolizada debe volver a recolectarse en lugar de informarse. Agitar, el alcohol húmedo y forzar las células por un lumen excesivamente estrecho de calibre 25 rompen los glóbulos rojos. Dejar que el tubo al vacío se llene con su propio vacío es la técnica correcta; lo que causa hemólisis es aplicar succión extra, como al jalar una jeringa demasiado rápido.

    Referencia Domain 3E; k138 preanalytical considerations; hemolysis causes falsely elevated potassium, LDH, AST

  10. Al recolectar varios microtubos de recolección de una punción digital, ¿cuál orden se debe seguir?

    • APrimero el microtubo con EDTA, luego los de otros aditivos y al final el de sueroCorrecta
    • BPrimero el microtubo de suero, luego los de otros aditivos y al final el de EDTA
    • CLa misma secuencia que se usa para la punción venosa
    • DCualquier secuencia, porque los microtubos de recolección no tienen aditivos

    Por qué: El orden de extracción capilar es distinto de la secuencia de la punción venosa: después de cualquier muestra para gases sanguíneos, el EDTA se recolecta primero porque la sangre capilar empieza a coagularse y las plaquetas se agrupan en cuanto la sangre toca la piel, y el CBC es la prueba más afectada por esa agregación. Después siguen los microtubos con otros aditivos y al final los de suero. Los microtubos sí llevan los mismos aditivos que los tubos al vacío, por lo que la opción D es falsa.

    Referencia Domain 3E; k130 order of draw with microtubes; CLSI GP42 capillary order of draw (blood gas, then EDTA, then other additives, then serum)

  11. Un proveedor ordena dos sets de hemocultivos (blood cultures). El asistente médico restriega el sitio de punción con clorhexidina al 2% en alcohol isopropílico al 70%. ¿Cuál acción protege mejor la muestra contra la contaminación?

    • APalpar la vena una vez más con la yema del guante limpio para confirmar su posición.
    • BPuncionar apenas se aplique el antiséptico para que la flora de la piel no regrese.
    • CDejar secar el antiséptico por completo y puncionar sin volver a tocar el sitio.Correcta
    • DLimpiar el sitio preparado con gasa estéril para quitar el residuo del antiséptico.

    Por qué: La clorhexidina actúa por fricción más tiempo de contacto: restriegue el sitio con fricción durante 30 segundos completos y luego déjelo secar por completo al menos otros 30 segundos antes de puncionar. El contacto pasivo sin fricción no logra la antisepsia, y puncionar un sitio húmedo deja organismos vivos. Volver a palpar después de la preparación es una de las causas más comunes de un hemocultivo contaminado, y el guante no vuelve estéril el dedo: si hay que localizar la vena de nuevo, se debe limpiar el sitio otra vez. Secar el antiséptico con gasa elimina su acción residual. Los tapones de los frascos también se desinfectan con alcohol y se dejan secar antes de inocular. Un cultivo falso positivo lleva a antibióticos y hospitalización innecesarios, así que la técnica aséptica importa aquí más que en una extracción de rutina.

    Referencia NHA CCMA Test Plan Domain 3E Phlebotomy (k130 site preparation; k139 special collections); CLSI M47-Ed2 Principles and Procedures for Blood Cultures (30-second friction scrub, allow at least 30 seconds to dry)

  12. Los resultados de potasio de las extracciones de un asistente médico salen altos una y otra vez, aunque las muestras no presentan hemólisis y los pacientes no tienen síntomas. El asistente suele pedirle al paciente que bombee el puño varias veces durante la extracción. ¿Qué debe cambiar?

    • APedirle al paciente que abra el puño apenas fluya la sangre, sin bombear nunca.Correcta
    • BDejar el torniquete puesto toda la extracción para que la vena siga bien llena.
    • CCambiar a un set de mariposa calibre 23 para entrar mejor en una vena pequeña.
    • DCalentar el sitio unos minutos antes de la extracción para mejorar el flujo.

    Por qué: Bombear el puño con fuerza y de forma repetida hace que los músculos del antebrazo liberen potasio a la sangre atrapada debajo del torniquete, y eleva el potasio plasmático de 1 a 2 mmol/L, suficiente para llevar un valor normal al rango de hiperpotasemia aun en muestras sin hemólisis visible. La norma CLSI PRE02 (antes GP41) permite cerrar el puño una vez para que la vena resalte, pero indica evitar el ejercicio vigoroso de la mano, y el puño se abre apenas empieza a fluir la sangre, porque mantener el apretón durante toda la extracción también eleva el potasio. Dejar el torniquete puesto toda la extracción agrega hemoconcentración y empeora el error; el estándar es menos de un minuto antes de entrar a la vena. Una mariposa calibre 23 tampoco corrige la hemólisis: el lumen más estrecho y el flujo más lento la aumentan, y por eso se evitan las agujas más finas que el calibre 23; calentar el sitio responde a las venas difíciles. Ninguna de las dos toca el potasio liberado por el músculo. Un potasio falsamente alto puede provocar una nueva extracción o un estudio cardiaco innecesario.

    Referencia NHA CCMA Test Plan Domain 3E Phlebotomy (k138 preanalytical considerations pertaining to specimen quality); CLSI PRE02 (formerly GP41) Collection of Diagnostic Venous Blood Specimens; Don BR et al., Pseudohyperkalemia Caused by Fist Clenching during Phlebotomy, N Engl J Med 1990;322:1290; Joint EFLM-COLABIOCLI recommendation for venous blood sampling

Practicar el dominio completo

Otros temas

Ver todos los temas · Guías de estudio · Examen de práctica completo

Comenzar el examen de prácticaSu panel